ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO INDUSTRIAL
Enviado por Helena • 26 de Marzo de 2018 • 1.185 Palabras (5 Páginas) • 392 Visitas
...
- Transferir con una pipeta estéril, 10ml de la muestra homogenizada por agitación, y añadirlos a un frasco de dilución que contiene 90ml de buffer fosfato pH 7,2 estéril. Agitar el frasco vigorosamente (25veces). Rotular 10-1
- Transferir con una pipeta estéril, 10ml de la dilución 10-1 a un frasco de dilución con 90 ml de buffer fosfato pH 7,2 estéril. Agitar. Rotular 10-2
- Transferir con una pipeta estéril, 10ml de la dilución 10-2 a un frasco de dilución con 90ml de de buffer fosfato pH 7,2 estéril. Agitar. Rotular 10-3
- Con una pipeta estéril, transferir 1ml de la dilución 10-1 a cada una de 2 placas de petri estériles.
- Con una pipeta estéril, transferir 1ml de la dilución 10-2 a cada una de 2 placas de petri estériles.
- Con una pipeta estéril, transferir 1ml de la dilución 10-3 a cada una de 2 placas de petri estériles.
- Verter en cada una de las placas, 15 ml de agar saborauraud o agar papa-glucosa e incubar las placas sin invertir a 20-25 °c por 5 a 7 dias.
Salmonella
Toma de muestra: se tomo del lote del producto una muestra representativa de la aspirina.
Trasporte: se transporto de forma aséptica y aislada del ambiente hasta llegar al laboratorio para evitar la contaminación de la muestra.
Procedimiento:
Se pulverizo y se tomo 10 gr de aspirina para su análisis con 90 ml diluyente (caldo lactosado). Se incubo a 30− 35 °c por 24-48 horas.
AISLAMIENTO DE SALMONELLA
- Agitar la mezcla incubada y transferir 1ml a un tubo con 10ml de caldo selenito cistina. Incubar a 35 °c por 24 48 horas. ( obs.: Se incubo a35 °c por 24 horas)
- Después del periodo de incubación, mediante un asa hacer un aislamiento a partir del caldo selenito cistina al agar verde brillante. Incubar a 30− 35 °c por 24 48 horas (obs.: se incubo a 35 °c por 24 horas).
- Notar presencia de colonias típicas de salmonella: en agar verde brillante colonias pequeñas incoloras, rosadas o fucsias, transparentes u opacas.
E.coli
Toma de muestra: se tomo del lote del producto una muestra representativa de la aspirina.
Trasporte: se transporto de forma aséptica y aislada del ambiente hasta llegar al laboratorio para evitar la contaminación de la muestra.
Procedimiento:
Se pulverizo y se tomo 10 gr de aspirina para su análisis con 90ml del diluyente. Se incubo a 35°c por 24-48horas.
AISLAMIENTO DE E.COLI
- Con un asa, hacer un aislamiento a partir de caldo lactosado, a agar Mac Con-key. Incubar a 35°c por 24hs.
- Las colonias de coliformes en agar Mac Con-key son de color rojo ladrillo, eventualmente rodeadas de zonas de billis precipitada.
- Si no hay colonias típicas, la muestra cumple los requisitos en cuanto a ausencia de coliformes.
- Si hay colonias típicas, transparente uan de estas colonias a agar eosina azul demetileno-lactosa, según Levine. Incubar a 35 °c por 24 48 horas. Las colonias de E.coli en este medio, se caracterizan por dar color negro azulado a trasluz y brillo metálico dorado verdoso a luz incidente.
Investigación de Staphylococcus aureus y Pseudomonas aeruginosa.
Toma de muestra: se tomo del lote del producto una muestra representativa de la aspirina.
Trasporte: se transporto de forma aséptica y aislada del ambiente hasta llegar al laboratorio para evitar la contaminación de la muestra.
Procedimiento:
Se pulverizo y se tomo 10 gr de aspirina para su análisis con 90ml del diluyente . Se incubo a 35°c por 24-48horas.
AISLAMIENTO DE STAPHYLOCOCCUS AUREUS.
- Agitar la mezcla incubada y mediante un asa hacer el aislamiento a agar Vogel-Johnson (o agar Baird-Parker o Agar manitol sal). Incubar a 35 °c por 24-48 horas.
Las colonias típicas de staphylococcus aureus en agar Vogel-Johnson o en agar Baird-Parker, son pequeñas, negras, rodeadas de una zona amarilla.
...