Actividad integradora de laboratorio de ciencias

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5. En cada una de las sección ya identificadas se deberá sembrar en dos pocillos separados 3 cm uno del otro, en una el cilantro y se coloca el letrero correspondiente, en la segunda el perejil colocándole el letrero correspondiente y la semilla de apio debe llevan antes de ser sembrada el tratamiento de estratificación, para lo cual deberás dejarla remojando por 24 horas en agua tibia (agua caliente de la llave) y después sembrarla en la sección del recipiente colocándole el letrero correspondiente. Deberás realizar este procedimiento para los dos recipientes. Para el sembrado deberás tomar en cuanta una profundidad en la tierra de 2.5 cm para cada pocillo y colocar de 4 a 6 semillas correspondientes en cada pocillo.

6. Ubicar los recipientes en un lugar en donde reciba por lo menos 4 horas de luz solar de manera indirecta y que la temperatura se mantenga constante. No deberá colocarse en áreas donde le dé directamente el sol ni donde los pájaros puedan comerse las semillas o dañar las plantas.

7. Adquirir una caja de aspirinas (acido acetilsalicílico) de 500 mg y preparar una solución con una pastilla molida disuelta en un litro de agua caliente para obtener una solución con una concentración de 2.775x10–3M y colocar en el atomizador y etiquetarlo como “acido acetilsalicílico”, en otro atomizador colocar agua de la llave y etiquetarlo como

“agua”. Podrás preparar la solución de acido acetilsalicílico cuantas veces sean necesarias para el riego de las plantas.

Uno de los recipientes con las plantas será regado con la solución de acido acetilsalicílico y el otro con agua. Recuerda

que los recipientes ya fueron identificados en el punto 3 de estos procedimientos para que riegues al que

corresponda.

8. Los riegos a las áreas donde fueron sembradas las plantas deberá ser con una regadera de jardín o atomizador para

evitar que las semillas salgan a la superficie y no logren germinar, el riego deberá realizarse dos veces al día, la

primera preferentemente por las mañanas antes que salga el sol y al atardecer. Cuando las plantas germinen

deberán rociarle la solución y el agua en las hojas y también en el suelo con tierra, asegurándote de ponerle una

cantidad de agua suficiente para que se humedezca toda la tierra.

Discusiones

Los primeros estudios para ver el efecto de la aplicación del ácido salicílico (AS) en plantas, reportaron que esta molécula favorece el proceso de enraizamiento en fríjol (Basu et al., 1969) y el cierre estomático (Larqué–Saavedra, 1978, 1979). Se han publicado desde entonces numerosos artículos que dan constancia de que el AS tiene efectos positivos en las plantas cultivadas.

Entre otros reportes en los que se menciona que las aplicaciones de AS afectan positivamente varios procesos fisiológicos, resaltan los relacionados con plantas bajo condiciones de estrés, como sequía (Horvath et al., 2007; Tasgn et al., 2003; Singh y Usha, 2003) fitotoxicidad (Metwally et al., 2003) y bajas temperaturas (Janda et al., 1999; Farooq et al., 2008).

Se ha estimado su efecto en la estimulación de la oxidación mitocondrial (Raskin, 1992), en la acumulación de compuestos fenólicos y cumarinas (Kovacik et al., 2008), en la embriogénesis somática en cultivo de tejidos (Luo et al., 2001; Quiroz–Figueroa et al., 2001), en el incremento de biomasa en soya (Gutiérrez–Coronado et al., 1998), en pinos (San Miguel et al., 2003), maíz (Genes et al., 2007) y trigo (Shakirova et al., 2003). Se ha reportado también que altas concentraciones de AS causa estrés oxidativo, que la planta es incapaz de restaurar, llegando en ocasiones a causarle la muerte (Yalpani et al., 1992).

En otra línea de investigación paralela, en los últimos 20 años se ha descubierto que el AS endógeno está involucrado en las respuestas fisiológicas a patógenos, campo en donde se ha desarrollado una gran cantidad de información referente a su producción endógena a nivel celular en la llamada resistencia sistémica adquirida (SAR).

En años recientes nuestro grupo de trabajo ha descrito dos respuestas de las plantas a la aplicación del AS. La primera se refiere al hecho de que el AS incrementa significativamente el crecimiento radical, efecto que fue también demostrado utilizando bioensayos de raíces transformadas de Catharanthus roseus .La segunda es que concentraciones a nivel de picomoles o femtomoles son suficientes para producir efectos morfofisiológicos significativos con bioensayos especializados (Echevarría et al., 2007, Quiroz–Figueroa et al., 2001).

MATERIALES Y MÉTODOS

Semillas de tomate (Lycopersicon esculentum, Mill. cv. Maya) de crecimiento determinado tipo saladet, fueron sembradas en charolas de poliestireno de 200 cavidades con un volumen unitario de 30 cm3. Las cavidades de las charolas fueron llenadas con una mezcla (2:1) de sustrato Cosmopeat y Perlita mantenidas con suficiente humedad. A los 9 y 13 días después de la emergencia, las plántulas fueron asperjadas con AS con alguno de los tratamientos de 1.0; 0.01 y 0.0001 μM AS o agua como testigo.

Las soluciones de ácido salicílico (Merck) utilizadas en el presente estudio, fueron preparadas siguiendo la metodología definida por Gutiérrez Coronado–et al.(1998).

Posteriormente cada plántula fue trasplantada a una maceta, con el mismo sustrato. La fertilización de las plantas se realizó con una solución nutritiva de 380 mg·L–1 de N, P y K. Para la prevención y control de enfermedades se utilizó 1 ml·L–1 de propamocarb (Previcur N, Bayer Cropscience) y carbendazim (Derosal 500D, Bayer Cropscience). Las plántulas fueron cultivadas en un invernadero con apertura cenital y plástico con 25 % de sombra y en condiciones óptimas de humedad, hasta la cosecha de las mismas que ocurrió 20 días después de la emergencia de las plantas. Se utilizó un diseño experimental completamente al azar con 24 repeticiones por tratamiento.

Las variables evaluadas fueron: altura, medida con una regla desde la base del tallo hasta el ápice terminal de la planta. Las plántulas fueron seccionadas en hojas, tallos y raíces. El área foliar se determinó utilizando un medidor de área foliar L1–3100 (LI–COR, Inc., USA); el peso fresco del vástago (hojas y tallo) se pesó con