Fotosíntesis de villavicencio, colombia

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Figura 1. Separación de pigmentos.

2. NECESIDAD DE LA CLOROFILA EN LA FOTOSINTESIS.

Se tomaron algunas hojas de una planta membranosa con trisconas, las cuales cinco no habían hecho su fotosíntesis durante dos semanas y las otras si, estas hoja se hirvieron en agua caliente para ablandarla, y luego con alcohol para mejorar su absorción, las dos diferentes plantas, se tomaron y se agregó lugol, aquellas hojas que habían hecho su fotosíntesis normal se tiñeron ya que contenía almidón mientras que las otras no.

Figura 2 Hoja membranosa con trisconas, con fotosíntesis.

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Figura 3 Hoja membranosa con trisconas, sin fotosíntesis.

DISCUSIÓN DE RESULTADOS

En el presente laboratorio se tomó una hoja de espinacas la cual se le extrajo sus extractos por medio de un macerado con etanol, con este se realzo una cromatografía, es una técnica de análisis químico utilizada para separar sustancias puras de mezclas complejas. Esta técnica depende del principio de adsorción selectiva (no confundir con absorción). La cromatografía fue descubierta por el botánico ruso, de origen italiano, Mikhail Tswett en 1906, pero su uso no se generalizó hasta la década de 1930. Tswett separó los pigmentos de las plantas (clorofila) vertiendo extracto de hojas verdes en éter de petróleo sobre una columna de carbonato de calcio en polvo en el interior de una probeta. A medida que la solución va filtrándose por la columna, cada componente de la mezcla precipita a diferente velocidad, quedando la columna marcada por bandas horizontales de colores, denominadas cromatogramas. Cada banda corresponde a un pigmento diferente. La biología y la química son herramientas primordiales y necesarias para la realización de experimentos como la "cromatografía de las plantas". Para la realización de este proyecto se seleccionaron las hojas y flores de cayena e isora, luego nos dirigimos a la casa de nuestra compañera Ángel Marielena donde colocamos la muestra en un mortero las trituramos y luego le colocamos Acetona, para finalmente colocar la mezcla en un embudo previamente preparado con el papel de filtro y de esa manera se obtuvieron los diferentes colores de los que están compuestas las hojas de las plantas que tomamos como muestra. (Collins, 1088).Esto se comprobó en este

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laboratorio ya que se realizó, estos procedimientos y se identificaron los pigmentos de las hojas de espinaca, las cuales gracias a la cromatologia se identificaron los pigmentos como se observa en la figura 1.

En un segundo experimentos se comprobó la importancia de la fotosíntesis para la creación del almidón ya que por Fotosíntesis se transforman sustancias inorgánicas de baja energía potencial como el H20, sales minerales, fotones de luz solar y el CO2 atmosférico, mediante la clorofila (pigmento foto receptor) sintetizada en los tilacoides ,para la transformación en sustancias orgánicas de alta energía potencial( almidón, celulosa, etc). En la fase luminosa el H20 interviene en un proceso de oxidación, en la cual la molécula de antena del fotosistema II la p680+( foto ionizada) por su poder oxidante rompe la molécula de H20 en 2H+, 1 e- que es aceptado por este pigmento recuperando su estabilidad molecular y O2 atmosférico que es liberado hacia la atmósfera, por su parte, el CO2 se fija y se reduce en un Hidrato de C fosforado, el Pgal, mediante la enzima Ribulosa 1,5 difosfato carboxilasa, presente en el ESTROMA del cloroplasto, esta enzima junto con el ATP y el NADPH2 producidos en la fase lumínica transforman el CO2 en moléculas orgánicas de mayor complejidad.(cayon,2001) esto se comprobó en que las hojas que no recibieron luz durante dos semanas y no realizaron fotosíntesis, no las tiño el lugol ya que no crearon almidón, mientras que las otras se tiñeron totalmente, ya que estas realizaron su fotosíntesis normal.

BIBLIOGRAFÍA

- ALLINGER, N.. Química orgânica. Reverté, 1978.

- AUDESIRK, T. AUDESIRK, G. BYERS, B. Biología: ciencia y naturaleza. Pearson Educación, 2004.

- CAMPBELL, N.; REECE, J. Biología. Ed. Médica Panamericana, 2007.

- CAYÓN SALINAS, D. G. Evolución de la fotosíntesis, transpiración y clorofila durante el desarrollo de la hoja de plátano (# Musa# AAB Simmonds). Infomusa (FRA)., 12(15), 10. 2008.

- COLLINS, C. H., & BRAGA, G. L. Introdução a métodos cromatográficos. In Introdução a métodos cromatográficos. Unicamp. 1998.

- CURTIS, H. SCHNEK, A. Curtis. Biología. Ed. Médica Panamericana, 2008.

- REDES GARCIA, R. COLLAZO ORTEGA, M. Manual de prácticas de fotosíntesis. Unam, 2006.