Demanda bioquimica de oxigeno.

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Verificación de la calidad del agua de dilución (control)

Corrientemente se uso la misma agua destilada que inicialmente se uso para preparar el agua de dilución; sin embargo, se debió evitar que esta agua contenga sustancias tóxicas, como cloro residual, amoniaco, u otras sustancias tóxicas como cobre, sobre todo si se ha utilizado piezas de este metal en el proceso de destilación agua.

Para probar la calidad del agua de dilución, se tomo tres muestras de ésta agua en botellas de vidrio DBO de 300 ml. En el primer frasco se determino el oxígeno inicial (Oi), y los otros dos frascos fueron incubados a 20°C ± 1°C en una estufa cerrada, por 5 días, al cabo de este (5to día) se determino el oxígeno final (Of).

El consumo de oxígeno en los frascos que fueron incubados no debió estar fuera del rango: 0,1 a 0,2 mg l-1, con lo cual se pudra considerar válido el análisis de las muestras.

Prueba control con glucosa-acido glutámico

El fin de esta prueba fue la de comprobar la calidad inóculo que se vertió al agua de dilución, o para descartar cualquier sospeche de que las muestras puedan contener sustancias bactericidas.

Esta prueba se realizo utilizando 20 ml de la solución estándar control glucosa-ácido glutámico, a la que luego se enraso a 1000 ml con el agua de dilución inoculada. Luego con esta dilución se llenaron 3 botellas DBO de 300 ml, con el cuidado necesario para no generar burbujeo a la hora de transferir la dilución a las botellas DBO, posteriormente se toma oxigeno inicial (Oi) a una de las botellas, luego las otras dos se sometieron a incubación por 5 días a 20°C ± 1°C en estufa cerrada, al cabo de ese tiempo se midió el oxígeno final (Of). La medida de oxigeno final en las botellas de DBO debió estar en el rango: 180 a 230 mg l-1.

Preparación del laboratorio

Es importante haber hecho una limpieza general del laboratorio y colocar en un lugar adecuado todos aquellos equipos y materiales que se utilicen durante la práctica.

Los materiales de laboratorio utilizados estuvieron exentos de cualquier residuo de materia orgánica, para este propósito se utilizo detergente, seguido de tres enjuagues con agua corriente, luego se lavaron con una mezcla sulfocrómica, se enjuagaron tres veces con agua destilada, después de lavo con ácido nítrico, se enjuago tres veces con agua destilada, y luego se puso a secar en estufa.

Obtención de muestra (campo)

Las muestras fueron tomados en 4 estaciones diferentes de la Bahía Samanco cada estación presentaban características que nos llevaron a determinar las diferencias de unas de la otras, para la toma de cada muestra se realizo el mismo procedimiento, llegando a determinar a simple vista una distancia de la orilla a donde se encuentra la estación de muestreo, procediendo después a medir la profundidad para poder determinar la profundidad a que se debe lanzar la Botella muestreadota la misma que fue de 3m de distancia de la superficie, luego de lanzada la botella el contenido de la misma se recolecto en un balde plástico de 20l esperando un minuto para realizar la misma acción por 3 veces consecutivas, llegan a solo tomar una muestra de 1l en una botella de vidrio con tapa colocándola en un couler con hielo en posición vertical para así mantenerla a 4ºC aproximadamente, solo después de tomadas las muestras es posible tenerlas a es temperatura por solo una hora hasta llegar a Laboratorio.

Muestra procesada en laboratorio

Luego de culminar la toma de muestras en el campo son llevadas a laboratorio donde se extraerán las mismas del couler para poder llevarlas a una temperatura de 20ºC ± 1ºC, para luego proceder a tomar el pH los cuales deben estar en los rangos de 6.5 a 7.5, de nos era si es necesario neutralizar con solución de NaOH 20gl-1 o HCl 0,2%, según convenga.

Después se extrajo de las estaciones 1, 3 y 4 solo 250 y 500 ml de cada botella y de la estación 2 solo 100 y 250 ml respectivamente , colocándolas en una fiola para luego enrazar a 1000 ml con agua de dilución, luego de la misma fiola se extraen en 3 botellas BOD de 300 ml donde en una de ellas se le mide el Oxigeno disuelto inicial (Oi) y las otras dos son llevadas a incubación por un periodo de 5 días a una temperatura de 20ºC ± 1ºC y en condiciones de completa oscuridad, para impedir la mínima posibilidad de fotosíntesis, para así medir el Oxigeno disuelto final (Of).

Paralelamente a la preparación de las botellas BOD con las diferentes diluciones se debe llenar 3 botellas con agua de dilución para determinar el blanco, utilizar también la primera para la determinación de Oxigeno disuelto inicial (Oi), someter a incubación las otras dos y luego al quinto día medir el Oxigeno disuelto final (Of).

A cada botella se le dejo un “sello de agua” de tal modo que impida la perdida de gases, así como tampoco el ingreso de aire a la botella durante el periodo de incubación, por lo tanto todas las botellas deben disponer de un capuchón de material de plástico no solo las muestras obtenidas en campo si no también las pruebas del agua de dilución, nosotros tuvimos por conveniente colocarle globos en cada una de las botellas.

Con los resultados que se obtuvieron, se trabajo primero con el criterio de selección que nos permite descartar las diluciones que no cumplen con la siguiente característica:

2,0

Luego de determinar las diluciones que cumplen con el criterio de selección, se procedió a calcular la DBO5 de la muestra, para lo cual se debe aplicar la siguiente formula:

[pic 4]

donde:

DBO5 = Demanda bioquímica de oxígeno a 5 días

ODi = Concentración de oxígeno disuelto inicial, en la muestra diluida

ODf = Concentración de oxígeno disuelto de la muestra diluida al quinto día.

Fd = fracción volumétrica decimal de la muestra empleada en la dilución.

RESULTADOS

Es importante recalcar que la obtención de DBO5 es un método que depende de muchos factores, tales como la calidad de agua de dilución, la procedencia de la materia orgánica presente en la muestra, como biocidas o metales tóxicos en bajas concentraciones, la variación de la calidad de inoculo de bacterias, etc.,

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