DIVERSIDAD CELULAR. OBSERVACIÓN DE CÉLULAS ANIMALES Y VEGATALES.

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Figura 1.

- Cromatografía de pigmentos vegetales

Extracción: Poner en un mortero las hojas verdes, agregar la mezcla de acetona:cloroformo, macerar hasta obtener una pasta, agitar muy bien y filtrar a través de varias capas de gasa o papel de filtro. Recoger el filtrado en un embudo de separación para obtener la porción verde esmeralda que contiene los pigmentos vegetales con los que se trabajará.

Para realizar la cromatografía siga el procedimiento del numeral 1. Utilizando como solvente la mezcla de acetona y éter de petróleo. Reporte los resultados en la tabla correspondiente y conserve el cromatograma.

- Variaciones del cromatograma con diversos solventes

Haga tres cromatografías utilizando la misma muestra de pigmentos vegetales y el mismo procedimiento del literal 2. Cambiando el solvente o fase móvil, utilizando los diferentes solventes suministrados por el profesor. Realice las mediciones, reporte los resultados en la tabla correspondiente y conserve el cromatograma.

- Variaciones del cromatograma con diversas fases estacionarias

Haga tres cromatogramas diferentes con la muestra de tinta utilizando agua destilada como solvente cambiando los tipos de papel (de filtro, periódico, bond). Realice las mediciones, reporte los resultados en la tabla correspondiente y conserve el cromatograma.

- Producción de almidón durante la fotosíntesis

- Tome hojas de espinaca o elodea y cubra la mitad de cada una con papel aluminio. Exponga la hoja (con la mitad descubierta y la otra mitad tapada) a un bombillo de 100 w por 1 hora

- Corte la hoja en pequeños pedazos y una porción de hojas en la oscuridad y otra en hojas iluminadas con el bombillo colóquelas en caja de Petri que contienen yodo o reactivo de Lugol. Compare la forma en la cual se han coloreado las hojas.

- Otra porción de las hojas, tanto las que estuvieron en la oscuridad como las que fueron irradiadas por un bombillo, colóquelas en un beaker con alcohol caliente sobre una plancha de calentamiento. Lave nuevamente con alcohol y saque las hojas. Coloque las hojas en una cápsula de Petri con yodo y observe los cambios

Referencias

- Biology: Life on earth. 7ta ED. Audesirk, T; Audesirk, G and Byers, B. E. NEW JERSEY: PRENTICE HALL. Disponible en: http://wps.prenhall.com/esm_audesirk_bloe_7/

- CHATAING, Bernardo y NIEVES, • Elsa. Manual de laboratorio de Biología. Textos Universitarios. Universidad de los Andes. Mérida. Venezuela. 2011

- ESCOBAR U., Luis Dario; URAN C., Luis Alberto. Manual de Laboratorio de Biología General. Centro de duplicación Universidad de Antioquia. 1979.

- URIBE A., Frank; MORENO M., Jaime; ALDANA E., Daniel y PINEDA G., Nubiola. Manual de Laboratorio de Biología General. Reimpresos, Universidad de Antioquia. 1998.

- MUÑOZ, D. Paulina; VALENCIA, Z., Hernando; Aguirre, G., Luis;Becerra, D., Nubia; Vargas, Rosana; Reyes, Lucy; Rozo, Guillermo; Mejía, Miguel. Prácticas de Biología General. Centro Editorial. Universidad Nacional de Colombia. Bogotá. 1987.

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INFORME PRÁCTICA

- Cromatografía de una muestra de tinta

Muestra

Solvente

Distancia del solvente (cm)

Pigmentos

Distancia en cm

Rf

Tinta

1.

2.

3.

4.

5.

6.

- Cromatografía de pigmentos vegetales

Muestra

Solvente

Distancia del solvente (cm)

Pigmentos

Distancia en cm

Rf

Pigmentos vegetales

1.

2.

3.

4.

5.

6.

- Variaciones del cromatograma con diversos solventes

Muestra

Solvente

Distancia del solvente (cm)

Pigmentos

Distancia en cm

Rf

Pigmentos vegetales

1.

2.

3.

4.

5.

6.

Pigmentos vegetales

1.

2.

3.

4.

5.

6.

Pigmentos vegetales

1.

2.

3.

4.

5.

6.

Realice un análisis de resultados, respondiendo las siguientes preguntas:

¿Se separó el mismo número de pigmentos en los 4 casos? ¿Hubo separación de pigmentos con agua destilada? ¿Cuáles pigmentos