PRÁCTICA DE IDENTIFICACIÓN DE MACROINVERTEBRADOS ACUÁTICOS Y PERIFITÓN EN EL RÍO FRÍO EN LA RESERVA DEL DIVISO.

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Se necesita conocer:

- Localización

- Anchura

- Profundidad

- Tipo de substrato

- Grado de sombra

- Otros datos de interés ecológico

- Etiquetado de la muestra

Se inicia con sellar y etiquetar cada frasco consignando:

- Código de la estación de muestreo.

- Nombre del cuerpo de agua.

- Tipo de sustrato(s).

- Fecha de la recolección.

- Fijador utilizado.

- Área en caso esta se encuentre determinada.

- Datos del colector.

4.8. Técnica de preservación de la muestra

Si las muestras recolectadas se conservan vivas, deben ser almacenados en una hielera o en un refrigerado y solo por unas pocas horas. Para el análisis de largo plazo, el perifitón debe ser preservado en fijadores y conservantes. Un fijador y preservante altamente utilizado para la recolección de perifitón es el Transeu, llamado también solución 6:3:1, por constar de seis partes de agua, tres de alcohol etílico al 95 G.L. (Gay Lussac) y una parte de formalina. La fijación y preservación del material se efectúa adicionando un volumen de solución igual al de la muestra, es decir en proporciones 1:1. (Ramírez. 2000)

Para lograr un mejor aprovechamiento de la solución se utilizaran frascos de ámbar de 120 ml, de capacidad. De los cuales 20 ml corresponderán a la solución Transeu y los 100 ml restantes compuestos por agua destilada, tratando lo mayor posible de evitar la pérdida de volumen, la cual será de gran utilidad para establecer las características de las muestras, tanto cualitativa y cuantitativamente.

4.8.1. Identificación y análisis de las muestras

Identificación

Para la óptima identificación de los componentes de esta comunidad se debe realizar, a nivel de especie aunque hay análisis que pueden realizarse a nivel de género. Es recomendable para un inventario tener en cuenta una clasificación alterna como sp.1, sp.2

4.8.2. Equipo y material de laboratorio

- Microscopio compuesto equipado con oculares de 10 o 12.5, y objetivos de 10x, 40x y 100x.

- Cámara digital acoplada al microscopio.

- Porta y cubre-objetos

- Goteros.

- Pipetas.

- Estiletes y pinzas.

- Placas Petri de diferentes tamaños.

- Formularios para anotar la lista de taxones.

- Guías de identificación.

4.8.3. Técnicas de muestreo

- Análisis cualitativo

Consiste en realizar la identificación de los taxa presentes en la muestra sin importar su cantidad. Se pueden realizar observaciones al microscopio con lámina-laminilla y tratamientos específicos para cada grupo. Es necesaria aquí al menos una revisión completa de la lámina con 3 a 5 repeticiones dependiendo del tamaño de la laminilla a utilizar. Cuando las muestras de perifiton se examinen bajo el microscopio, se cuentan e identifican teniendo en cuenta distintas categorías como: cocoides azul verdes, filamentos azul verde, flagelos verdes, diatomeas centrales y diatomeas pennadas (Rosselt et al.. 1982)

- Análisis cuantitativo

Para este análisis es indispensable conocer el área de la colecta teniendo en cuenta el tipo de sustrato para el cálculo así como la cantidad de agua destilada utilizada en la preservación de la muestra. El resultado es expresado en densidad absoluta: número de individuos/unidad de superficie. Se pueden utilizar cámaras de conteo como la de Sedgwick- Rafter o se puede calcular el volumen de muestra analizada en otro tipo de lámina siempre y cuando se analice todo el campo.

Este análisis permite obtener diversos índices como: diversidad, productividad y biomasa. La mayoría de algas naturales rara vez necesitan de dilución o concentración Y pueden someterse a un recuento directamente, lo que hace aún más fácil el trabajo de laboratorio con este tipo de organismos, pero que en algunos casos es necesaria para mantener la muestra bien conservada.

4.8.4. Aseguramiento de la calidad

- Colecta

-hábitat definido.

-Rango de performance: diferencia vs eficiencia de diferentes tipos de sustrato.

-Interferencias: limitantes físicas (velocidad de la corriente, profundidad).

-Clima.

-Personal entrenado.

-Etiquetado correcto.

- Identificación y análisis de la muestra

-Calibración de los equipos regularmente.

-Manejo adecuado de las muestras en el laboratorio mediante un protocolo interno.

-El personal debe demostrar una capacitación constante.

- RESULTADOS

- ANALISIS CUALITATIVO

- ANALISIS CUANTITATIVO

- CODIFICACION DE DATOS

- ANÁLISIS DE DATOS

- CÁLCULO DE ÍNDICES DE DIVERSIDAD PARA TODOS LO PUNTOS DEL MONITOREO

- MACROINVERTEBRADOS ACUATICOS.

- INSTRUMENTOS DE REGISTRO DE INFORMACIÓN DE LABORATORIO

- Formatos de análisis en laboratorio.

- Registro fotográfico macroinvertebrados acuáticos.

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