Cobre antimicrobiano contra patógenos intrahospitalarios en Perú

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las nueve cepas (3 de E. coli, 3 de S. aureus y 3 de P. aeruginosa) proporcionadas por la unidad de cuidados intensivos del Hospital Regional Docente “Las Mercedes” (HRDLM) y del Hospital Provincial, se realizó un análisis primeramente aislándolas en agar sangre (placas de Petri) identificadas según su composición química de la siguiente manera:

Posteriormente las cepas fueron independientemente gestadas en agar TSA[5], cubiertas herméticamente y depositadas en refrigeración a 4ºC.

Con el fin de analizar la acción de las bacterias en las superficies adquiridas comercialmente mediante Storm Copper y JN aceros, se aplicó el siguiente ejemplar [7] modificado:

Fueron cortadas nueve láminas de cobre C1100 y nueve láminas de acero inoxidable a un tamaño de 1cm2 para luego ser cubiertas en papel, por 1 hora ser esterilizadas en autoclave y luego hundidas en etanol al 95%. Acto seguido, fueron expuestas o flameadas al mechero por 2 segundos y prontamente llevadas a placas Petri también esterilizadas.

Después, las 9 cepas fueron sacadas de refrigeración dejándose a temperatura ambiente durante 5 minutos. A continuación, un grupo de cada cepa fue trasladado a 2 mL de caldo nutritivo incubándose a 37ºC por 16 horas. El sembrado de bacterias obtenido se diluyó con agua destilada estéril hasta alcanzar ~2 x107 UFC/mL de acuerdo al tubo número 0,5 del nefelómetro de Mac Farland [5].

Ulteriormente, cada lámina de cobre y acero inoxidable fue contagiada con 10 μL de las suspensiones bacterianas (2 x 107 UFC/mL), cada cultivo fue repartido sobre el metal con una punta estéril de 10 μL y luego las láminas metálicas fueron incubadas por triplicado a temperatura ambiente a distintos tiempos de exposición (t0=0 min, t1= 5 min, t2= 10 min, t3= 15 min, t4= 20 min, t5= 30 min, t6= 45 min, t7= 60 min, t= 75 min).

Con el fin de apartar las bacterias de la superficie metálica, este se lavó, sumergiéndolo con el cultivo dentro de un tubo estéril con 1 mL de solución salina fisiológica, para posteriormente ser agitado por un minuto y ser retirado el metal. Pronto, la suspensión celular obtenida fue expuesta a diluciones de 10-1, 10-2, 10-3 y 10-4 y 10 μL de la dilución 10-4 fueron sembrados en placa mediante la técnica de la microgota [8] e incubados a 36ºC por un período de 24 horas.

Dicho proceso fue utilizado para todos los tiempos de exposición, determinándose el tiempo suficiente para que las superficies de cobre eliminaran las cepas estudiadas por triplicado, teniéndose en cuenta cuando no resultaba crecimiento de bacterias en los cultivos. El rango de exposición fue de 75 minutos, divididos como se mostró anteriormente.

Finalmente, en el análisis estadístico, los resultados dados tanto para la actividad de las superficies de cobre, como para el control de acero inoxidable y formación de CFU/mL de las cepas analizadas fueron comparados.

La significancia adecuada se consiguió gracias al análisis de ANOVA de una vía mediante el software MINITAB y luego, se hizo una prueba de Tuckey (p<0,05), con el propósito de llegar a un grupo dado de estas diferencias a través de la utilización de la versión 13 del software Sigma plot.

Resultados

Los resultados obtenidos mostraron que, en las cepas de E. coli y P. aeruginosa depositadas en las placas de cobre, el cobre las eliminó en un tiempo máximo de 15 y 10 minutos respectivamente, representando un tiempo relativamente menor a las cepas de S. aureus que, a diferencia de las anteriores, tuvieron una duración para la eliminación completa de 60 minutos. Por otro lado, las cepas colocadas en las láminas de acero inoxidable, no mostraron reducción de células, manteniéndose constante con el número inicial.

Conclusiones

El artículo anterior llega a la conclusión que, al ver los resultados obtenidos, el cobre o sus aleaciones deben proponerse como reemplazo de los aceros inoxidables dentro de los hospitales, para lograr la disminución de las IIH.

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

[1] E. Neciosup, M. Vergara, O. Pairazamán, M. Apablaza, and M. Esparza, “Cobre antimicrobiano contra patógenos intrahospitalarios en Perú,” An. la Fac. Med., vol. 76, no. 3, p. 9, 2015.

[2] R. N. Hernández, “Visión actualizada de las infecciones intrahospitalarias,” Rev. Cuba. Med. Mil., vol. 31, no. 3, pp. 201–208, 2002.

[3] Organización Mundial de la Salud, “Prevención de las infecciones nosocomiales,” Guia Pract., vol. 2, p. 70, 2002.

[4] Revista cubana de medicina militar. Editorial Ciencias Médicas.

[5] V. Prado J, M. Esparza M, R. Vidal A, and C. Durán T, “Actividad bactericida de superficies de cobre frente a bacterias asociadas a infecciones nosocomiales, en un modelo in vitro de adherencia y sobrevivencia,” Rev. Med. Chil., vol. 141, no. 3, pp. 291–297, Mar. 2013.

[6] G. Borkow and J. Gabbay, “Copper as a Biocidal Tool,” Curr. Med. Chem., vol. 12, no. 18, pp. 2163–2175, Aug. 2005.

[7] J. O. Noyce, H. Michels, and C. W. Keevil, “Potential use of copper surfaces to reduce survival of epidemic meticillin-resistant Staphylococcus aureus in the healthcare environment,” J. Hosp. Infect., vol. 63, no. 3, pp. 289–297, Jul. 2006.

[8] S. Mehtar, I. Wiid, and S. D. Todorov, “The antimicrobial activity of copper and copper alloys against nosocomial pathogens and Mycobacterium tuberculosis isolated from healthcare facilities in the Western Cape: an in-vitro study,” J. Hosp. Infect., vol. 68, no. 1, pp. 45–51, Jan. 2008.