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CARNICOS ENLATADOS

Enviado por   •  16 de Diciembre de 2018  •  2.406 Palabras (10 Páginas)  •  305 Visitas

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Trading Co., LTD, Brasil

6 Corned beef Target, Brasil

7 Fiambre de pollo California Garden, embalado en Holanda bajo la autoridad de la Industria alimentaria

8 Mortadele de Poulet Danborg, Robert, Damkjaer, Dinamarca

9 Corned beef Bordon, Brasil

10 Corned beef California Garden, Pampeano Alimentos Hulha Negra / RS, Brasil

11 Salchichas de Viena en lata - la marca de pollo Picnic, EE.UU., San Diego, California, Industria alimentaria

12 Almuerzo Beef Siniora comida Industrias, Jordania

13 Corned beef Target, Brasil

Opciones de tabla

Antes del análisis, la superficie del recipiente, se limpió con etanol al 70% y la tintura de yodo. Los contenedores se abrieron cerca de la llama del mechero Bunsen para evitar la contaminación. El pH de las muestras fue grabado utilizando un medidor de pH.

3. Análisis bacteriológico

Diez porciones gramos de los alimentos se mezclan en una licuadora en guerra estéril y se inocularon en tubos triplicados de 90 ml infusión cerebro corazón (BHI) (Oxoid) y mediano carne cocida (Oxoid) y en MacConkey y agar EMB placas que se incubaron aeróbicamente a 37 ° C y 45 ° C para coliformes. Al final del tiempo de incubación, las colonias se contaron usando un contador de colonias (Stuart Científico, Reino Unido).Los resultados se expresaron como ufc / g. Colonias características en las placas fueron Gram manchadas, purificado por subcultivo repetido y almacenado en tubos inclinados de agar o agar puñalada si anaeróbico, hasta nueva caracterización. La identificación de los aislamientos se realizó mediante tinción de Gram, prueba de indol, prueba de ureasa, prueba de catalasa, prueba de rojo de metilo, prueba de la utilización de citrato, prueba Vogues-Proskauer, licuefacción de gelatina, la hidrólisis del almidón, las pruebas de fermentación de azúcar, la movilidad y las características culturales de los medios de cultivo.

Confirmación de la identificación se basó en los siguientes métodos; Agar llano para el recuento total de bacterias (TBC), agar Violeta Rojo Bilis para el recuento de coliformes totales y fecales (FCC), agar Baird Parker por Staphylococcus cuenta, Bacillus cereusagar para Bacillus cereus recuento, agar verde brillante por Salmonella contar y agar Rosa de Bengala de Recuento total molde.

4. Análisis de Micología

El método de la placa de dilución descrito por Pitt y Hocking en 2009 fue contratado para este fin (Easa, 2010). Las tasas de dilución adecuados oscilaron entre 1.2 a 1.10 (peso / volumen). Culturas en 5 repeticiones por muestra se prepararon y se incubaron a 28 ° C durante 7-10 días después de lo cual se contaron, identificar y aislar las colonias que crecen en cultivos puros.

5. medios de aislamiento

Se eligieron dos tipos de medios para el análisis micológico de las muestras de carne procesada y usadas por Taniwaki et al., 2009, King et al., 1979 y Pitt y Hocking., 2009 ySamson et al. (2004). Estos medios fueron:

5.1. Agar dicloran Rosebengal cloranfenicol (DRBC)

El medio contiene (g / l): 5 g de peptona, glucosa 10 g, KH 2 PO 4 1 g, MgSO 4 · 7H 2 O 0,5 g, dicloran (2,6-dicloro-4-nitroanilina) solución (0,2% ( w / v) en etanol) 1 ml, Rosa de Bengala 0,025 g, cloranfenicol 0,1 g, agar 15 g, agua destilada y 1000 ml. El pH final debe ser 5,6. Ingredientes se mezclan, se calienta para disolver agar y se esterilizó en autoclave a 121 ° C durante 15 min. Se deja que el medio a enfriar a 45 ± 1 ° C en un baño de agua antes de verter chapado. Agar DRBC es especialmente útil para el análisis muestra que contiene moldes "spreader" (por ejemplo, Mucor, Rhizopus, etc.), ya que el dicloran añadido y Rosa de Bengala frenar efectivamente el crecimiento de los hongos de rápido crecimiento, por lo que permite fácilmente la detección de otras levaduras y mohos propágulos, que tienen menores tasas de crecimiento.

5.2. Dicloran 18% de glicerol agar (DG18)

Se compone de (g / l): peptona 5 g, glucosa 10 g, KH 2 PO 4 1 g, MgSO 4 · 7H 2 O 0,5 g, dicloran (0,2% en etanol) 1 ml, glicerol 220 g, cloranfenicol 0,1 g, agar 15 g, y agua destilada 1000 ml. Estos medios se trataron en autoclave a 120 ° C durante 20 min.Mezclar los elementos anteriores y vapor para disolver el agar, a continuación, llevar el volumen a 1000 ml con agua destilada. Añadir 220 g de glicerol y esterilizar en autoclave a 121 ° C durante 15 min. El pH final debe ser de 5.6 y el final de un w, 0.955. Este medio se utiliza como un medio de enumeración molde de propósito general y se prefiere cuando el un w de la comida analizada es 0,95 o inferior. La baja actividad de agua de este medio reduce la interferencia por bacterias y hongos de crecimiento rápido.

5.3. Identificación de cultivos de hongos

Se utilizaron los rasgos morfológicos macro y microscópicos para identificar los diferentes hongos aislados de contaminar las muestras de carne procesada. Las siguientes referencias fueron consultados para comprobar la correcta identificación: de Hoog et al. (2002), Samson et al. (2004) y Pitt y Hocking (2009).

6. Evaluación de la contaminación por metales pesados tóxicos

Se analizaron todas las 13 muestras de contaminación por metales pesados tóxicos. Se utilizó asistida por microondas digestión ácida para todas las muestras, y los contenidos elementales y sus infusiones se determinaron mediante FAAS y ICP-AES.Procedimiento de digestión de microondas se aplicó en condiciones optimizadas para la disolución de las plantas a base de hierbas.

6.1. Digestión ácida, FAAS y ICP-AES

En cilindro de 400 ml, 300 ml de HCl concentrado y 100 ml de concentrado HNO 3 fueron añadidos. La mezcla se transfirió a un matraz aforado de 1000 ml y el volumen se completó con DIH 2 0. La mezcla se invirtió para mezclar y se deja reposar.

Las muestras se secaron a 70 ° C durante 24 h tras lo cual fueron molidos en un molino de Spex. Crisoles y las tapas se prepararon por lavado en 10% HNO 3 y amortiguado a 75 ° C durante 2 h. Muestras de tierra de 0,5 g se colocaron en cada crisol usando un Mettler (cuatro lugar) el equilibrio y se colocan en horno de mufla para llevar hasta la temperatura de incineración (45 ° C) lentamente durante 90 min y se incinera durante 4 h. Crisoles se dejaron

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